Реферати українською » Медицина, здоровье » Збір і транспортування проб біологічних матеріалів для бактеріологічного дослідження


Реферат Збір і транспортування проб біологічних матеріалів для бактеріологічного дослідження

Страница 1 из 6 | Следующая страница

ПІВНІЧНИЙ ДЕРЖАВНИЙ МЕДИЧНИЙ УНІВЕРСИТЕТ

КУРС КЛІНІЧНОЇЛАБОРАТОРНОЙ ДІАГНОСТИКИ

Керівник проф.Воробьева Н.А.


Збір і транспортування проб біологічних матеріалів для бактеріологічної дослідження

Виконалаврач-ординатор Петрова Л. У.

Архангельськ 2009 р.


Зміст

Ведення

1. Загальні засади

2. Правила біологічну безпеку

3. Обладнання ГЕС і середовища для взяття матеріалу

4. Техніка взяття основних видів біологічного матеріалу

4.1 Кров

4.2 Ліквор

4.3Отделяемое з чільних дихальних шляхів

4.3.1Мазок зі слизових передніх відділів порожнини носа

4.3.2Соскоб зі слизових передніх відділів порожнини носа

4.3.3Слизь з носоглотки і носа

4.3.4Слизь з задньої стінки горлянки

4.3.5Слизь з задньої стінки горлянки

4.3.6Назальний змив

4.3.7Аспират з придаткових пазух

4.4Отделяемое з нижніх відділів дихальних шляхів

4.4.1Мокрота

4.4.2Промивние води бронхів

4.4.3 Проби, отримані з допомогоюбронхоскопа

4.5Желчь

4.6Моча

4.7Отделяемое з сечостатевих органів чоловіків і жінок

4.7.1 Твердий шанкер, папули,розеоли

4.7.2 Матеріал з уретри

4.8 Матеріал з статевих органів чоловіки

4.8.1Язва статевого члена

4.8.2 Матеріал з простати

4.8.3 Матеріал з яєчка, його придатків і пахвинних лімфатичних вузлів

4.9Отделяемое жіночих статевих органів

4.9.1 Матеріал з піхви

4.9.2 Матеріал зцервикального каналу

4.10Раневие (хірургічні) інфекції

4.11 Проби при запальних захворюваннях очей

4.11.1 Матеріал з кон'юнктиви

4.11.2Соскоб з роговиці

4.11.3Смив з контактних лінз

4.12 Проби при запальних захворюваннях органів слуху

4.12.1Отделяемое з зовнішнього слухового проходу

4.12.2 Рідина притимпаноцентезе

4.13 Інфекції в стоматології

4.13.1 Вміст ззубодесневого кишені

4.14 Проби випорожнення

4.14.1Нативние випорожнення

4.14.2Ректальние мазки (>Rectalswabs)

5. Особливості взяття матеріалу і мовного оформлення напрями на дослідження при деяких клінічних ситуаціях

5.1 Оформлення напрямів на дослідження

5.2 Взяття матеріалу виявлення стрептококів групи У

5.3 Взяття матеріалу для діагностики дисбактеріозу і захворювань, що викликаютьсяусловно-патогеними бактеріями

5.4 Взяття матеріалу при підозрі на холеру по МУ 4.2.1097-02

5.5 Взяття блювотних мас і промивних вод

5.6 Взяття біоптату на дослідження нахеликобактер

5.7 Взяття матеріалу при підозрі наинтранатальную інфекцію

5.8Грудное молоко

5.9Серодиагностика

5.10 Взяття крові з вени

5.11 Взяття крові за допомогою вакуумної системи

5.12 Взяття крові за допомогою шприца

5.13 Одержання сироватки з венозної крові

5.14 Взяттяпапиллярной крові щоб поставитимикрореакциипреципитации із єдиною метою діагностики сифілісу

Укладання

Список використаних джерел


Ведення

У цьому рефераті я відбила правила збирання й транспортування деяких біологічних матеріалів мікробіологічні лабораторії. Наведені способи допоможуть підвищити якість результатів лабораторних досліджень, що у своє чергу створить умови для своєчасної організації протиепідемічних і профілактичних заходів, і навіть сприятиме якісної профілактиці внутрішньолікарняних інфекцій як в медичного персоналу, і пацієнтів.


1. Загальні засади

Взяття матеріалу переважно проводити на початок антибактеріальної терапії. З огляду на антибактеріальної терапії матеріал забирають перед черговим запровадженням антимікробних препаратів, тобто у момент, якщо їх концентрація в організмі мінімальна.

При взяття проби слід суворо дотримуватися правил асептики, щоб уникнути її випадкової сторонньої контамінації.

Для взяття проб варто використовувати стерильні інструменти, а транспортування газу стерильні пробірки чи контейнери. Використання нестерильних сухих, чистих пробірок можлива тільки для добору, і транспортування крові насерологические дослідження.

Кількість матеріалу має бути достатнім щодо дослідження.

Транспортування матеріалу має здійснюватися в максимально стислі терміни: зазвичай, трохи більше 1,5 — 2 годин.

Завжди слід використовувати транспортні системи з середовищем (консерванти), що дозволяє пролонгувати час транспортування до 24 годин і більше чи здійснювати посів безпосередньо в ліжку хворого (кров, ліквор та інших.);

Матеріал на дослідження нанеспорообразующие анаероби, доставляється без використання транспортних систем з середовищем (консервантів) повинен транспортуватися:

· у спеціальній герметично закритому флаконі, заповненому інертним газом, куди проба вноситься шляхом проколу кришки голкою шприца;

· в одноразовому шприці, з яких видалено повітря, і кінчик якого закритий або стерильною гумової корком, або голкою, з надягнутим її у штатним захисним ковпачком.

Усі зразки повинен мати чітку маркірування, що забезпечує їх безпомилкову ідентифікацію. До кожного зразком прикладається напрям. У якому напрямі на дослідження повинні прагнути бути відбито такі дані:

· дата та палестинці час призначення дослідження;

· дата та палестинці час взяття біологічного матеріалу;

·Ф.И.О. пацієнта;

· відділення, номер амбулаторноїкарти/истории хвороби, номер палати;

· вік, підлогу;

· діагноз;

·Ф.И.О. лікаря;

· перелік необхідних досліджень;

· підпис фахівця, яке проводило паркан клінічного матеріалу.


2. Правила біологічну безпеку

До роботи з узяття і транспортування біологічного матеріалу допускається медичний персонал, минулий спеціальний інструктаж технічно праці та заходам безпеки.

При взяття біологічного матеріалу потрібно використовувати засоби захисту: медичні халати, шапочки, змінна взуття, гумові (>латексние, вінілові) рукавички, а за необхідності — додатково марлеві маски (респіратори), окуляри, клейончасті фартухи.

Працювати з досліджуваним матеріалом рухається у гумових (>латексних, вінілових) рукавичках, все ушкодження шкіри на руках повинні бути закриті лейкопластиром чинапальчником. Слід уникати уколів і порізів.

Що стосується забруднення шкірних покровів кров'ю чи іншими біологічними рідинами слід негайно обробити їх протягом 2 хв. тампоном, рясно змоченим 70% спиртом, вимити під проточній водою з милом і витерти індивідуальним тампоном. При забруднення рукавичок кров'ю їх протирають тампоном, змоченим 3% розчином хлораміну, 6% розчином перекису водню.

При підозрі потрапити крові на слизові оболонки, їх негайно обробляють струменем води, 1% розчином протарголу; рота і горло прополіскують 70% спирт або 1% розчином борної кислоти чи 0,05% розчином перманганату калію.

Для транспортування зразків варто використовувати переважно пластикову одноразову тару, герметично закриту пластмасовими, гумовими пробками чизавинчивающимися кришками. Забороняється використовувати скляну посуд зі відколами, тріщинами тощо. При транспортуванні судин, закритихцеллюлозними (ватяними) пробками, слід виключити їх зволоження.

Транспортування біоматеріалу ввозяться спеціальних закритихпереносках (>укладках), бажано -термостатированних, витримують дезінфекцію.

Супроводжувальна документація міститься у готовий до неї кишеню перенесення (укладання), а разі його відсутності — кладеться в перенесення в окремому поліетиленовому пакеті.

При зберіганні біологічного матеріалу не в холодильнику кожен зразок упаковується в окремий поліетиленовий пакет. З цією метою виділяється окремий холодильник, збереження до якому харчових продуктів лікарських засобів неприпустиме.

 


 

3. Обладнання ГЕС і середовища для взяття матеріалу

Для взяття і транспортування біологічного матеріалу варто використовувати одноразові стерильнітубсери (пробірки з тампонами) промислового виробництва чи транспортні системи з середовищем.Ватние (бавовняні) тампони, виготовлені у лабораторії з медичного вати можна використовувати лише у у крайньому випадку, оскільки медична вата може матиантимикробними властивостями.

Для зняття можливого бактерицидного дії тампони з медичного вати після виготовлення кип'ятять вбуферном розчині Соренсена (18 мл1/15М розчинуКН2Р04 + 8,2 мл 1/15 М розчинуNaHP04; pH 7,4),встряхивают, висушують в термостаті, вміщують у пробірки і стерилізують в автоклаві при120°С 30 хвилин.

Якщо тампони призначені для взяття матеріалу на гонорею їх 20 хвилин кип'ятять вфосфатном буфері (181,7 мл0,2МNaH,P04 + 18,3 мл 0,1 М розчину лимонної кислоти; рН 7,4) іимпрегнируют протягом 24-х годин на 1 % водної суспензією тонко подрібненого деревного вугілля. Потім тампони висушують,подправляют, монтують в пробки і стерилізують в автоклаві при120°С 20 хвилин.

Для транспортування матеріалу доцільно використовувати спеціальні транспортні системи з середовищем. Їх вибір з урахуванням виду матеріалу, мети дослідження та технічних можливостей здійснює лабораторія. До найбільш універсальних транспортних середовищ ставляться середовище Стюарта і середовище Еймс.

Транспортна система з середовищем Стюарта Середовище Стюарта є напіврідкий, бідний поживою субстрат задля збереження і транспортування широкого спектра патогенних мікроорганізмів, як-отNeisseriagonorrhoeae,Haemophilusinfluenzae,Corynebacteriumdiphteriae,Trichomonasvaginalis,Streptococcussp.,Salmonellasp.,Shigellasp. та інших. Найбільш вимогливі мікроорганізми зберігаються у цій середовищі більше доби, інші -за кілька днів.

Наявність у середовищітиогликолата придушує ферментативну активність бактерій, а відсутність азоту попереджує їх розмноження.

Транспортна система з середовищем КеріБлейр

Становить собою модифікацію базової транспортної середовища Стюарта, призначену спеціально для фекальних зразків.Глицерофосфат, єметаболитом деяких ентеробактерій (>Escherichiacoli,Klebsiellapneumoniae, та інших.), замінений неорганічним фосфатом, видаленометиленовий синій, і рН середовища піднята до 8,4.

Середовище КеріБлейр дозволяє зберігати більшість патогенів, включаючи вимогливі мікроорганізми, такі, якNeisseriasp.,Haemophilussp.,Streptococcussp. Ця середовище є стандартної транспортуваннюанаеробов.

Транспортна система з середовищем Еймса

Становить собою чергову модифікацію базової транспортної середовища Стюарта, у якій гліцерофосфат замінений неорганічним фосфатом, оскільки гліцерофосфат єметаболитом деяких ентеробактерій (>Escherichiacoli,Klebsiellapneumoniae, etc.) і може підтримувати зростання деякихграмотрицательних мікроорганізмів.

>Метиленовий синій замінили активоване вугілля фармацевтичного якості. У четвер додано кальцій і магній підтримки проникності бактеріальних клітин.

Ця середовище здатна більше трьох днів підтримувати такі мікроорганізми, якNeisseriasp.,Haemophilussp.,Corynebacteria,Streptococci,Enterobacteriaceae та інших., проте найкращі результати дає культивування протягом 24часов.2 годин. З використанням транспортної системи з середовищем термін доставки проби до лабораторії можна продовжити максимально до 72 годин.

 


 

4. Техніка взяття основних видів біологічного матеріалу

 

4.1 Кров

Свідчення до проведення дослідження: клінічна картина сепсису; гарячкові стану невстановленої етіології; пневмонії; підозра на інфекційних захворювань: черевної тиф іпаратифи,сальмонеллези, бруцельоз, поворотний тиф,лептоспирози, малярія, епідемічний менінгіт,пневмококковие інфекції, харчовітоксикоинфекции (за наявності лихоманки),стафилококковие істрептококковие інфекції, сибірка, туляремія, чума.

Кількість незалежноотбираемих проб крові й час їхнього взяття визначається лікарем (табл. 1). Зазвичай, їх потрібно досліджувати щонайменше 2—3 проб крові, кожна з яких узята шляхом окремоївенепункции. Це необхідне диференціації істинної бактеріємії від випадкової контамінації крові привенепункции. Можливість забруднення внаслідок випадкового проколу сальної чи потовий залози становить 3%.

Таблиця 1.Рекомендуемое числоотбираемих проб крові залежно від клінічної ситуації

>Клиническое стан

>Кол-во

проб

Примітка
Гострий сепсис, менінгіт,менингококоцемия, остеомієліт, артрит, гостра пневмонія, пієлонефрит 2 з цих двох судин чи двох ділянок кровоносного судини до початку антибактеріальної терапії
Лихоманка незрозумілого генезу 4 спочатку 2 проби із різних кровоносних судин (двох ділянок судини), потім через 24—36 год. ще 2 проби

>Эндокардит, млявий сепсис:

у період загострення приподостром чивялотекущем перебігу

2 - 3(6) з цих двох судин чи двох ділянок кровоносного судини перші 1— 2 години підйому температури тіла, на початок терапії спочатку 3 проби з інтервалом 15 хв. і більше. Якщо вони самі негативні, на добу збирають ще 3

>Эндокардити у пацієнтів:

одержують антибактеріальну терапію і натомість антибіотикотерапії

6 по 2 окремі проби протягом трьох днів упродовж 48 год

У хворих, одержують антибактеріальні препарати, проби необхідно збирати безпосередньо перед запровадженням наступній дози препарату. За наявності лихоманки оптимальним є взяття крові і натомість підвищення температури тіла (але не піку температури!).

Необхідна оснащення.

1.Шприци одноразові20-граммовие (для дітей10-граммовие) з голками длявенепункции. Забороняється використовувати шприци зі «стерильного столу» в перев'язочній, перевіряти прохідність голки,просасивая неї повітря.

2.Флакони з живильними середовищами: середовище дляаеробов і факультативниханаеробов + середовище дляоблигатниханаеробов (наприклад, подвійна середовище + середовищеСКС) чи універсальна середовище дляаеробов іанаеробов.Предпочтительно використовувати промислово вироблені середовища, дозволені до застосування. З використанням виготовленою у лабораторії середовищаСКС як індикаторанаеробиоза у ній додаютьрезазурин, який червоніє у присутності кисню. Що стосується почервоніння більш 20% верхню частину стовпчика середу регенеруютьпрогреванием протягом 20 хвилин, у киплячій водяній бані.Регенерацию можна навести лише одноразово. За відсутностірезазурина середу регенерують напередодні посіву в обов'язковому порядку. Оптимальний засіб відбору проби венозної крові є вакуумнідвухфазние флакони до апаратаБактек (>Bactec).

3. 70° етиловий спирт.

4. 2% чи 5% настоянка йоду.

5.Венозний джгут.

6. Гумові (>латексние, вінілові) рукавички.

7.Спиртовка (лише за використанні флаконів зі середовищами, виготовленими до лабораторій).

Взяття досліджуваного матеріалу.

Маніпуляції проводять із дотриманням правил асептики. Кров беруть біля ліжка хвору чи в перев'язочній (процедурної) і відразу засівають на живильні середовища. Рекомендується здійснювати ці процедури вдвох. Один медичний працівник проводить обробку шкіри хворого,венепункцию і взяття крові, другий, тим часом відкриває над полум'ям спиртівки пробки флаконів зі середовищами, підставляє їх під струмінь крові з шприца, обпікає горлечка флаконів і закриває їх.

Кров на дослідження отримують шляхомвенепункции.

Порядок обробки шкіри взяття крові наступний:

1. шкіру надпунктируемой віднем обробляють 70° спиртом;

2. завдають 2-5% йодну настойку, круговими рухами, починаючи з центру, за тридцяти сек.;

3. коли висохнуть йодної настойки проводятьвенепункцию;

4. пальпувати посудину у районі запровадження голки після обробки шкіри не можна;

5. протирають шкіру 70° спиртом.

Дорослі кров беруть під обсязі 10-20 мл, в дітей віком — залежно від його віку.

Відразу після взяття кров засівають на живильні середовища. Співвідношення крові й середовища має бути 1/10—1/60 усунення бактерицидного дії крові шляхом її розведення. Техніка посіву залежить від виду використовуваних поживних середовищ.

З використанням середовищ лабораторного приготування, розфасованих у флакони зцеллюлозними (ватяними) пробками, посів проводять так:

· знімають голку зі шприца;

· над полум'ям спиртівки відкривають флакон;

· вносять половину крові з шприца у флакон;

· ліплять шийку і пробку флакона у полум'ї спиртівки;

· закривають флакон корком;

· обережно, ніж замочити пробку, перемішують вміст флакона круговими рухами;

· другу порцію крові з шприца вносять на другий флакон, повторюючи зазначені операції.

З використанням флаконів зі середовищами промислового виготовлення у флаконах з гумовими або пластиковими пробками:

· за наявності на флаконах захисних ковпачків їх видаляють (>отгибают), не відкриваючи у своїй пробки;

· пробки флаконів обробляють 70% етиловим спиртом (використання йодної настойки визначається рекомендаціями виробника середовищ);

· кров на рівних обсягах вносять в «аеробну» і «>анаеробную» живильні середовища, проколів у своїй пробки флаконів. Якщо передбачається проведеннябактериоскопического дослідження, додатково готують препарат «товста крапля» і мазок.

Для приготування мазка краплю крові діаметром 2—3 мм завдають на знежирене предметне скло поблизу торця. Перед краплею крові ставлять з точки 45° одноразовий пластиковий шпатель для розтяжки мазків чи скло зі чистити краєм і плавним рухом рівномірно розподіляють матеріал поверхнею.

Для приготування препарату «товста крапля» на скло завдають краплю крові діаметром майже п'ять мм розподіляють її з допомогою голки чи піпетки в диск діаметром 10—15 мм. Товщина краплі повинна дозволяти бачити неї газетний шрифт. Іноді мазок і препарат «товста» крапля готують однією склі. І тому на поверхню приготовленого як описано вище мазка до його засихання завдають ще одне краплю крові. Вона, зазвичай, сама розтікається в правильний диск товщини.

Препарати висушують («товста крапля» сохне 2—3 години) і доставляють до лабораторії у спеціальній планшеті

Страница 1 из 6 | Следующая страница

Схожі реферати:

Навігація